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TECHNICAL ARTICLES单克隆抗体的纯化是一个关键步骤,确保抗体的高纯度和活性。以下是一般性的单克隆抗体纯化流程:
细胞培养: 单克隆抗体通常是从哺乳动物细胞或其他表达系统中生产的。首先,需要进行细胞培养,以产生抗体。
收集培养上清液: 抗体通常以分泌的形式存在于培养上清液中。上清液是通过离心来去除细胞碎片和细胞残渣,然后收集清液以进行后续处理。
蛋白A亲和层析: 蛋白A是一种常用的亲和层析介质,用于纯化大多数IgG类型的抗体。抗体可以与蛋白A结合,而其他污染物则不会结合,因此可以通过洗脱步骤来纯化抗体。
离子交换层析: 如果需要进一步提高纯度,可以使用离子交换层析来去除残留的污染物和其他蛋白质。通过调节盐浓度和pH值,可以选择性地洗脱抗体。
尺寸排除层析: 这是一个常用的步骤,用于进一步去除任何残留的杂质,如聚集物或碎片。尺寸排除层析根据分子大小将溶液分离,较大的分子会被排除,而较小的单克隆抗体则通过。
浓缩和 buffer exchange: 在纯化的最后阶段,抗体可以被浓缩,并且可以进行缓冲液的交换,以适应后续的实验或应用。
纯化后的分析: 纯化后的抗体需要进行质量分析,包括浓度测定、纯度分析、功能测试等,以确保其适用于预期的应用。
以上步骤是单克隆抗体纯化的一般流程,具体操作可能会因实验目的、抗体类型和纯化系统的不同而有所变化。
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